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植物生长调节剂修改果座,果实质量和甜樱桃的回复开花

Hortscience
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  • 1上海交通大学农业与生物学学院植物科学系,上海上海200240,中华人民共和国
  • 2华盛顿州立大学园艺和景观建筑系灌溉农业研究和推广中心,24106 N. Bunn Road, Prosser, WA 99350
  • 3.上海交通大学农业与生物学院植物科学系,上海闵行200240

甜樱桃(普鲁尼乌斯唉L.)是全世界有价值的水果作物。农民的收入与果实数量和质量密切相关,但这些可能在多年来的高度变化。作为优化甜樱桃的水果套装和水果品质的更广泛项目的一部分,该研究进行了评估各种植物生长调节剂(PGR)的潜力,用于改善水果套和果实质量。Cytokinins,胃纤维素,植物素和多胺用作治疗。将治疗作为叶状喷雾作为盛开的叶状喷雾​​到“Bing”和三种低生产率基因型,'Regina','Tieton'和'PC8011-3'。我们评估了各种治疗的水果套装,水果质量和回报绽放。4-氯苯氧基乙酸(4-CPA)分别在“Bing”和'Tieton'中增加了53%和36%的水果。吉布林素(GA)的组合3.+ GA4/7对于改善不同于吉布林素的其他异构体,更有效。除了CPPU之外,Cytokinin治疗对水果套装具有轻微不良影响或没有影响。在“PC8011-3”中,与未处理的对照相比,N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯基脲(CPPU)和4-CPA增强果实。樱桃树对多胺喷雾的反应依赖于品种的性质和治疗浓度。GA的叶面申请3.,Ga4/7n -苯基- n '-(1,2,3 -噻二唑-5-基)脲(TDZ)对Bing树的返花有负面影响1可以增加产量和花蕾。这些结果表明,PGR可能对甜樱桃果实集具有不同的影响,并且需要更多的工作来开发用于提高产量安全性的实用计划。

摘要

甜樱桃(普鲁尼乌斯唉L.)是全世界有价值的水果作物。农民的收入与果实数量和质量密切相关,但这些可能在多年来的高度变化。作为优化甜樱桃的水果套装和水果品质的更广泛项目的一部分,该研究进行了评估各种植物生长调节剂(PGR)的潜力,用于改善水果套和果实质量。Cytokinins,胃纤维素,植物素和多胺用作治疗。将治疗作为叶状喷雾作为盛开的叶状喷雾​​到“Bing”和三种低生产率基因型,'Regina','Tieton'和'PC8011-3'。我们评估了各种治疗的水果套装,水果质量和回报绽放。4-氯苯氧基乙酸(4-CPA)分别在“Bing”和'Tieton'中增加了53%和36%的水果。吉布林素(GA)的组合3.+ GA4/7对于改善不同于吉布林素的其他异构体,更有效。除了CPPU之外,Cytokinin治疗对水果套装具有轻微不良影响或没有影响。在“PC8011-3”中,与未处理的对照相比,N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯基脲(CPPU)和4-CPA增强果实。樱桃树对多胺喷雾的反应依赖于品种的性质和治疗浓度。GA的叶面申请3.,Ga4/7n -苯基- n '-(1,2,3 -噻二唑-5-基)脲(TDZ)对Bing树的返花有负面影响1可以增加产量和花蕾。这些结果表明,PGR可能对甜樱桃果实集具有不同的影响,并且需要更多的工作来开发用于提高产量安全性的实用计划。

甜樱桃(普鲁尼乌斯唉L.)是一个经济上重要的温带树果实物种蔷薇科家庭。在过去的20年里,甜樱桃的全球产量迅速增长,因为据报道,甜樱桃的消费对健康有益,生产者的潜在利润很高(Quero-Garcia et al., 2014)。樱桃是一种营养丰富的食物,含有大量的必需营养素和生物活性食物成分,如维生素C、多酚、类胡萝卜素、钾和纤维,而热量相对较低(mccune等人。,2010年).Cherries在色氨酸,血清素和褪黑激素中也很高(Cubero等人,2010年加里多等人,2012年).在决定作物价值时,甜樱桃产量和果实大小是关键属性。在世界许多产区,平均产量可超过20吨/公顷;但单株产量与果实品质呈负相关(Whiting and Lang, 2004)。此外,甜樱桃产量在品种、年份和产区之间存在很大的差异。低坐果率或过早的果实脱落都是导致产量下降(即落果)的因素。导致坐果不佳的因素有很多,包括昆虫授粉不足、花粉萌发低、活花粉低、花粉管生长低、胚珠衰老快、开花与授粉器重叠少或授粉器密度不足。种植几种花粉剂基因型和提高花粉剂树的密度是种植者可能用来解决花粉剂和低结实率问题的两种栽培方法。应用PGRs延长授粉成功期是提高坐果率的额外或补充解决方案。PGRs的处理可以引起多种效应和植物反应,包括操纵果树的果实大小、坐果、果实成熟和果实形状,包括甜樱桃(格林,1988年Ryugo,1988年;Stösser和Anvari, 1982)。不同浓度的PGRs对梨坐果有不同的影响(Pyrus Communis.)(张等人,2007),李子(Prunus domestica)(韦伯斯特,1984年)和甜蜜的樱桃(张和惠特,2011年).

关于PGR对果树果实影响的研究有很多,结果随PGR施用时间、浓度甚至施用技术的不同而不同。在之前的研究中,甜樱桃II-III阶段过渡期间的收获前施用赤霉素可以增加果实大小并推迟成熟(Clayton et al., 2006;Facteau等人,1985年;卡佩尔和麦克唐纳,2002年,2007;Lenahan等,2006年;proebsting等,1973年;Stern等人,2007年;Usenik等人,2005;张和惠特,2011年,2013)。类似地,已应用不同的木素来改善果实尺寸李属物种,包括李子,樱桃和杏子(p . armeniaca).赤霉素对花粉萌发也发挥了至关重要的作用(Zhang et al ., 2010),水果梨组和水果发展(Zhang et al ., 2007)和甜樱桃(张和白粉et al ., 2011年,2013年),和uniconazole,赤霉素生物合成的抑制剂,是一种有效的“必应”樱桃开花薄(斯特恩et al ., 2007)。在甜樱桃果实生长II期之前,吲哚乙酸和GA处理对果实生长有有利影响(Kondo et al., 1998;盐崎等人,1997)。遗传算法之间的密切关系3.甜樱桃坑硬化后的果实发育和脱落酸。

果实设定率由几个关键因素控制,包括内源性和外源性PGR。施肥和随后的代谢过程对水果质量有显着轴承。细胞分裂似乎仅在受精后的≈12-14-d时期发生(olmstead等人。,2008年因此,该阶段旨在通过外源性PGR来改善质量。赤霉酸,植物素和细胞素素的应用负责在一定水平的生长,但它们的协同效应适用于开发正常水果(Carrera等,2012)。GA.3.增加果实大小,改善果实硬度和延迟甜樱桃的成熟。有趣的是,果期II叶面施用prohexadione-钙和GAs影响了冠层源库关系,提高了‘Bing’(张和惠特,2011年).

由于传粉者+传粉者模型和对天气的敏感性,甜樱桃坐果在商业实践中一直备受关注。外源施用PGRs是一种通过延长有效授粉期和改善果实质量来稳定坐果的替代策略。在此,我们报告了2年多的研究,评估了PGRs叶面应用于甜樱桃坐果的潜力。

材料和方法

这项研究是在华盛顿州普罗瑟市北部的华盛顿州立大学罗扎农场进行的。46.2°N,长。119.7°W)。所有10年的甜樱桃树——‘Bing’、‘Tieton’、‘Regina’和‘PC 8011-3’——都接受了中央领导架构的训练。实验用的是10年树龄的树木。所有树木都采用相似的灌溉和施肥方式。

'Bing'是美国西北地区种植最广泛种植的甜樱桃品种,而“Tieton”,'PC8011-3'和“Regina”是具有低水果套装的新基因型。‘Regina’ is a late-season cultivar (‘Bing’ + 10 d), ‘Tieton’ fruit ripens ≈1 week before ‘Bing’, and ‘PC8011-3’, an advanced selection from the breeding program at WSU, is a yellow-fleshed blush genotype that ripens a few days before ‘Bing’.

化学物质

测试了四类的PGR,包括毒素,赤霉素,细胞质素和多胺。这些用于分析它们对水果套(即,施肥率)和果实生长的影响。我们的作品包括合成细胞蛋白:CPPU,N6-苄基(BA),TDZ和6-(3-羟基苄基氨基)嘌呤(Meta-Topholin);赤霉素异构体包括GA1,Ga3., GA的混合物4和遗传算法7(GA.4/7);合成的养羊酸,4-CPA;和三种多胺,包括二胺Putrescine(Put),三胺硫胺胺(SPD)和四胺精胺(SPM)。PGR购自Olchemim Ltd.(捷克共和国Olomouc)。

PGR应用程序

该实验包括14种治疗,包括用水处理的肢体的“对照”。所有治疗方法都是使用手枪喷雾器在盛开的阶段,四个品种的甜蜜樱桃,'Bing','Tieton','Regina'和'PC 8011-3'。PGR在不同浓度下施用:25ppm用于吉布林素,对于细胞素素15ppm,用于养肝剂30ppm,以及第一年的多胺(2009)的50ppm,而200%和200ppm用于明年的多胺(2010)盛开。为PGRS治疗选择了六个樱桃树上的三个樱桃树上的六种复制肢体,嫁接在'GISELA 6'上。对于完整的绽放喷雾和果实集计算,去除所选肢体上的死和未开封的花朵,剩余的总花朵被计算。水果集通过在收获时计算果实并计算为可用,可行的花朵的百分比。评估五十余壳,用于果实尺寸测量,果实长度和果实宽度,直至以7-D间隔收获。此外,为了调查对授粉和水果套的甜樱桃的风效,选择了路边和内部的“PC 8011-3”树作为PGRS处理的控制。

花粉管生长和胚珠活力

为了检测PGR对PGRS对有效授粉的影响,喷雾后的经处理的花朵被取样并固定在甲醛醇乙酸(FAA)中,10%:50%:5%+ 35%水)分析花粉管growth and ovule viability in ‘Tieton’. After the application of PGRs, including Put, Spm, Spd, GA3.,Ga4/7,CPPU和4-CPA,用24小时间隔采样,喷射后168小时以24-H间隔进行采样。FAA溶液含有95%乙醇:冰醋酸:37%福尔马林10:1:2(v / v / v)用于雌蕊固定。将蒸馏水重复三次30分钟以漂洗花组织,然后移至5N氢氧化钠溶液。当组织软化并留下后,随后将样品转移到0.1%苯胺蓝溶液中,然后将组织软化并留下,直至雌蕊变得透明,透明,≈10至14d。然后将整个雌蕊置于具有一个或两滴50%甘油的载玻片上,然后用盖玻片扁平。使用配备DP70数码相机系统的奥林巴斯BX51荧光显微镜检查幻灯片。

果实品质分析

对单个果实进行称重,评价果实重量分布。采用法国水果和豆类专业技术中心开发的甜樱桃色板(1 - 7刻度)对外果皮颜色进行手工分类评估。统计并计算各品类的果实数,用于颜色分布和颜色评级。随后,使用校准的FirmTech II (BioWorks, Inc., Wamego, KS)对所有水果进行相应的硬度测试和赤道直径测量。然后,随机选取25个果实,每5个重复进行可溶性固形物含量的测定。用数字折射仪(日本爱田谷)测量总可溶性固形物,用0.5 mL果汁进行测量。

回归绽放

为研究PGRs对甜樱桃‘Bing’的返花和小年结实的影响,本研究采用PGRs对甜樱桃‘Bing’的花蕾形成和花朵发育进行了研究。选择经PGRs处理的2年生枝条进行返青调查。抽芽前计数每骨刺的花蕾数,初白期计数每骨刺的花数。

统计分析

所有研究试验中使用了随机的完整块设计。在使用SAS统计分析包的一般线性模型程序(SAS Institute,Cary,NC)的同时,通过分析方差(ANOVA)来分析数据。Duncan的新多个范围测试和最低差异试验用于比较治疗,当ANOVA在手段之间显示出显着差异时。

结果与讨论

商业甜樱桃生产者关注的一个全球性问题是,不同季节的作物产量和基因型之间的显著差异。自不育甜樱桃品种授粉的老化系统一直是种植授粉树和引进蜜蜂授粉的方法之一。这种方法受到可变性、对天气和气候变化的敏感性的困扰。作为一种提高产量安全性和一致性的替代策略,我们研究了利用PGRs改善坐果的潜力。人们已经对各种PGRs进行了评估,并采用了一些商业处理,提供了操纵果实大小、坐果、果实成熟和果实形状的潜力。在之前的研究中,张和惠婷(2011))报道了许多PGR在羊毛蛋白糊剂中施用于单个果皮的疗效。在目前的研究中,我们研究了PGRS以更商业相关的方式施加的PGR施用,并将加压喷雾器与整个果冻的水肢。

水果套装

'bing'。

众所周知,外源激素和生长调节剂可以增加木本植物的坐果率(Crane et al., 1961)。包括四种赤霉素(GA1,Ga3.,Ga4/7和ga3.+ GA4/7)、四种细胞分裂素(BA、CPPU、Topolin和TDZ)、一种生长素异构体(4-CPA)和H2O(对照),在甜樱桃‘Bing’上进行了试验。我们发现几个PGRs显著影响了“Bing”的果座。有证据表明,生长素NAA和4-CPA对梨和番茄坐果和发育的影响最大(格林,1988年).在我们的工作中,4-CPA增加了多达53%的水果(图。1)与未经治疗的'Bing'相比。与未经处理的对照相比,赤霉素异构体还将水果改善34.3%至47.1%。我们以前的评估证明了GA4,Ga7,CPPU在诱导疗效果实增长方面非常有效,而GA1,Ga3.而IAA对日本梨的孤雌生殖没有诱导作用。然而,遗传算法的单个或多个应用3.与授粉相比,改进了水果套装Vaccinium corymbosum(Cano-Medrano and Darnell, 1998),以及GA的合并7和遗传算法4也改良了苹果的果盘(Modlibowska, 1972)。两个遗传算法3.和遗传算法4/7而不是遗传算法1能略微增加坐果量,但在‘Bing’上增加量不显著。进一步,结合遗传算法3.+ GA4/7与单独的胃肠杆菌素的其他异构体相比,改善水果套装更好的疗效。GA.3.单独没有统计上改善最终的水果套装(图。1),支持在GA之后观察到的快速增长3.最初在《必应》(Bing)和《黑心》(Black Heart)中接受了治疗,但后来枯萎并退出了(Misra和Sharma, 1972;Rebeiz and Crane, 1961)。因此,赤霉素同分异构体组合比单独使用更能有效地提高果实的坐果率。外源细胞分裂素显著增加了果实的形成葡萄(Weaver et al., 1965)。在开花时施用CPPU对有籽葡萄和无籽葡萄的坐果率有一定的促进作用,且效果与时间和速率有关。但细胞分裂素对果座的改善效果无显著差异,除了CPPU处理比对照高约15% (图。1).

图。1。
图。1。

开花时施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Bing’坐果的影响数据平均值±se.不同字母表示在a时PGRs之间存在显著差异P水平0.05(最低显著差异检验)。4-CPA = 4-氯苯氧基乙酸;ba = n6-苄基腺嘌呤;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;TDZ = N-苯基-N' - (1,2,3-噻唑-5-基)尿素;托普林蛋白= 6-(3-羟基苄基氨基)嘌呤。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

'tieton'。

七种治疗方法,包括三种多胺(放,SPD和SPM),两种嗜酸剂(GA3.和遗传算法4/7)、细胞分裂素(CPPU)和生长素(4-CPA),以水喷对照。‘Tieton’对照的坐果率较高,该品种的坐果率通常接近10% (M. Whiting,未发表的数据),约为25% (188金宝慱88金宝搏安卓图2一个).CPPU, 4-CPA, GA治疗3.和ga4/7有效地改善了果实,分别提高了36.7%,35.9%,35.3%和33.3%,而多胺对水果套没有显着影响。我们观察到多胺(SPM和SPD)应用后的水果套没有显着差异。相比之下,用50ppm的处理得到了果实含量显着降低的水果套装(图2一个).

图2。
图2。

开花期施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Tieton’坐果的影响数据平均值±se.不同的字母表示PGRs在a处的显著差异P水平0.05(最低显著差异检验)。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

多胺参与细胞分裂并在橄榄、荔枝和苹果等水果中发挥作用(Biasi et al., 1991;Mitra and Sanyal, 1990)。在一项研究中,多胺喷雾剂增加了苹果品种的坐果率,在开花时喷雾剂比开花前喷雾剂更能保持果实的品质(Costa et al., 1983)。

用不同浓度再次测试多胺。在第二年,应用更多浓度的多胺(例如,100和200ppm)来研究对水果套的反应。同样,控制水果套装异常高于≈35%(图2 b).腐胺处理对坐果的影响最大,增加了约60%,增加了约73%。然而,最高浓度(200ppm)对坐果没有影响。两种浓度下Spd对坐果率均无显著影响。相比之下,Spm在100 ppm时无效,但在200 ppm时比对照增加了约32%的坐果率。与Spd和Spm相比,Put (50 ppm)浓度较低时坐果变薄,浓度较高时坐果变厚。同样的结果也在甜橙中进行了检验,Put提高了坐果率,与Spd、Spm和对照相比,获得了最高的果实产量(729.3个/株)(Saleem et al., 2006)。

“女王”。

“Regina”是一种甜樱桃品种,和“Tieton”一样,产量很低。这是一个晚开花的基因型,果实在中季标准‘Bing’后10 d左右采收。多胺(Put、Spm和Spd)在' Regina '开花时的浓度为50 ppm,与其他处理(图5).整体果实套装较低,平均小于4%。与“Tieton”的结果类似,50 ppm的投入也减少了'Regina'的水果。次年,多胺再次用100ppm和200ppm进行测试。在100ppm下观察到改进的水果组,但当施用的浓度为200ppm时,注意到不利影响,除了SPD。只有200ppm的SPD改进的水果套装,它,类似于100 ppm,两种PPM均为200ppm缩小的水果套装。具有特异性浓度的特异性多胺对于果实设定增量是必不可少的。在芒果中也检查了同样的结果,其中Put,SPD,SPM用于水果套装增强(Singh和Singh,1995)。

“PC8011-3”。

在樱桃基因型'PC8011-3'上研究了4-CPA和CPPU对水果集的影响(来自展示糟糕的水果套装的WSU樱桃养殖计划的先进选择)。在这项研究中,选择了两个未处理的应用,路边(控制R)和内部(对照I),检查甜樱桃中的开放式授粉风截止。与对照I相比,CPPU和4-CPA增强型果实均为≈81%和100%。在用4-CPA(Gememi等,2006)和日本柿子施用时,在西红柿中观察到相同的水果套增量。

有趣的是,还观察到,对照r与对照I和高于PGR的治疗相比,对照R积累了最高含量至≈550%的果实(图6.).在路边街区调查的树木距离最近的街区约35米,种植甜樱桃“tietition”、“Lapins”、“Summit”和“Rainer”。一般来说,风并没有被认为是授粉的一个共同因素李属SPP。,包括樱桃和李子,蜜蜂是佛罗里达州的大多数昆虫游客(Holzschuh等,2012)。风授粉显着影响“PC-8011-3”中的水果,并与所有其他治疗相比,增加了400%的水果。在蓝莓中也证实了相同的结果,其中风呈正常改善水果套和果实尺寸(ISAACS和Kirk,2010)。

有效授粉期

植物的有效授粉是胚珠寿命和花粉的差异,发芽和到达胚珠。增加水果套装的一种方法涉及促进风格的花粉管的生长及其随后成功在胚珠衰老之前到达胚珠中的卵泡。早期的研究表明,在盛开改善的花粉管胚珠渗透和延迟胚珠衰老时,延迟了“摩擦”梨的成功授粉时间(Pyrus Communis.L.)至少2和4 d(Crisosto等,1992)。在目前的研究中,在甜樱桃'Tieton'中,花粉管的时期没有显着差异,在所有治疗中达到溜癖碱或卵巢,尽管SPD和SPM治疗似乎在喷雾后的早期阶段改善花粉管生长(图3.).高水平的多胺(PAs)在花粉管的生长中起着至关重要的作用(Gémes等,2016;Wu等人,2010)。外源施用PAs有助于花粉成熟、萌发和管伸长,这取决于PAs的剂量(Aloisi et al., 2016, 2017)。我们之前在“Tieton”和“Regina”的研究结果也支持了这一点。

图3所示。
图3所示。

植物生长调节剂在甜樱桃'泰龙盛开植物生长调节器对花粉管生长的影响。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

我们对胚珠活力的评估揭示了两种GA治疗的好处4/7和4-CPA (图4.):两种治疗显着改善了二次胚珠的可行性的胚珠寿命。初级胚珠的活力没有记录的差异。Stösser和anvari(1982)促进了甜樱桃胚珠的胚珠衰老,含有赤霉酸和苄腺嘌呤(Ba)治疗。在我们的工作中,我们看到改进的“Tieton”水果从GA治疗3.,CPPU和4-CPA(图2一个)但是,只有4-CPA似乎通过延长胚珠活力来影响有效授粉期的组分(图4.).目前尚不清楚与ga如何治疗3.CPPU改进了Tieton的果座。进一步的研究有助于更好地了解限制坐果的因素和克服坐果的生理机制。

图4所示。
图4所示。

开花时叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Tieton’胚珠活力的影响。(一个)主要胚珠;(B)二次卵子。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

图5所示。
图5所示。

开花时施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Regina’坐果的影响数据平均值±se.不同的字母代表了PGR的显着差异P水平0.05(最低显著差异检验)。把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

图6所示。
图6所示。

Effect of foliar application of N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea (CPPU) and 4-chlorophenoxyacetic acid (4-CPA) at full bloom on fruit set in sweet cherry ‘PC-8011-3’. Data are average ±se.不同的字母表示不同的植物生长调节剂在aP水平0.05(最低显著差异检验)。控制I:控制内部;控制R:控制路边。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

水果品质

PGRs通过调控甜樱桃果实生长中的细胞分裂和细胞扩张来调控细胞发育和生长(张和惠特,2011年).以前的研究已经验证了改善甜樱桃的水果尺寸和质量的潜力,特别是吉布林林(GA3.)在阶段II-III过渡(Clayton et al., 2006;Facteau等人,1985年;卡佩尔和麦克唐纳,2002年,2007;Lenahan等,2006年;proebsting等,1973年;Stern等人,2007年;张和Whiting,2013)。我们的小组评估了各种PGR,适用于果实发育的关键阶段及其在甜樱桃中的细胞分裂(即,阶段I)和/或细胞扩张(即,第III)中提高果实生长(即,张和惠特,2011年).目前的研究探讨了基因型果实质量的潜在改善,具有叶面涂抹于绽放的PGR。

水果的生长。

果实生长与受精后卵巢产生的激素有关。对于整个生长期的早期果实增长和其他人来说是重要的(Srivastava和Handa,2005)。Cytokinins加速早期果实生长速率,包括CPPU,BA和TOPOLIN(图7)在甜樱桃“Bing”。在“Bing”的第三周观察到最高的增长峰值,Toplin加速了这一增长,随后是TDZ,而在CPPU处理的第四周观察到相同的增长行为(图7).CPPU还促进了Tieton和PC8011-3的果实生长(图7B和C).这些结果说明了细胞分裂素在克服甜樱桃受精卵子房早期衰老方面的潜在好处。外源细胞分裂素增加受精卵子房的激素水平,有助于甜樱桃的早期生长。在苹果和葡萄中也观察到了同样的结果(Bangerth和Schröder, 1994)。

图7所示。
图7所示。

花期叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃果实生长的影响(一个)“必应”,(B)“Tieton”,(C)'PC 8011-3',和(D)“女王”。4-CPA = 4-氯苯氧基乙酸;ba = n6-苄基腺嘌呤;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺;TDZ = N-苯基-N' - (1,2,3-噻唑-5-基)尿素;托普林蛋白= 6-(3-羟基苄基氨基)嘌呤。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

图8所示。
图8所示。

花期叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃果实大小分布的影响(一个)“必应”,(B)“Tieton”,(C)'PC 8011-3',和(D)“女王”。

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

4-CPA还增强了甜樱桃的果实生长,并在治疗后第四周和/或第五周观察到最大生长加速。通过番茄和其他物种中的植物素(De Jong等,2009),观察到果实生长相同的强大支持。吉布林素适用于石材果生产,影响水果稀土,减少花蕾的分化,影响水果质量,延迟收获,提高储存性(Stern等,2007)。赤霉素也发挥在细胞分裂和甜樱桃伸长中的作用,外源GA异构体应用是增加果实生长的有用工具。在“Bing”中的控制中,在第二个,第三个和第四周观察到更高的果实生长速度。GA.4/7与其他GA异构体相比,‘Bing’在第2、3、4周的生长速度最高。“Tieton”也观察到类似的增长模式。高水平的气体显著减少早期卵巢衰老受精后。植物利用多种机制将GA保持在一个恒定的水平(GA homeostasis)。通过抑制赤霉素的生物合成和促进赤霉素的分解代谢,可以在植物组织中建立赤霉素的稳态。减少赤霉素生物合成基因GA20ox和GA3ox的表达被认为有助于生物合成的抑制,而提高分解代谢(前馈调节)则是由于赤霉素分解代谢基因GA2ox表达的提高。外源应用GAs促进GA20ox基因和CPS的上调,支持GA3ox基因的下调,有助于果实早期生长速度(Olimpieri et al., 2007)。多胺对细胞分裂和分化有直接影响,在早期阶段对生长发育有效(Shawky, 2003)。豆科植物也经历了同样的现象(Altman et al., 1982)。多胺对提高甜樱桃果实的生长速度也很有效。 Maximum growth acceleration was observed in the second week both in ‘Regina’ and ‘Tieton’ (图7B和D).多胺的增长促进行为仅仅是因为它们的阳离子分子结构,它在细胞间pH中获得了正细胞的阳性电荷,这在生长和发育中起着至关重要的作用。

水果的重量和大小。

对于甜樱桃来说,果实大小仍然是最重要的果实品质属性,因此制定实用的改善果实大小的策略是非常重要的。此前,采前施用GA对甜樱桃果实增重有积极的响应(灿丽等,2015;张和惠特,2011年,2013)。天然气也对水果重量产生了积极的影响:在“蒂亚顿”中观察到44%的增益,而当两者均用GA处理时,对照相比,“Bing”额外的重量增加了13.2%4/7在花期(表12).单一应用GA3.“Bing”和“Tieton”的单果重分别增加了9.6%和4.9%。生长素促进了果实发育的早期生长,但不影响果实的最终重量。4-CPA在‘Bing’和‘Tieton’中均未表现出显著的增重,但在‘PC 8011-3’中表现出轻微的增重,最高可达8%。

表1。

植物生长调节剂对果子重,固体,全溶质固体(TSS)的影响,以及甜樱桃'Bing'的颜色等级。

表1。
表2。

施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Tieton’果实重量、硬度、总可溶性固形物(TSS)和颜色评级的影响

表2。
表3。

施用植物生长调节剂对甜樱桃‘PC 8011-3’果实重量、硬度、总可溶性固形物(TSS)及颜色评级的影响

表3。
表4。

施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Regina’果实重量、硬度、总可溶性固形物(TSS)和颜色评级的影响

表4。

我们之前对日本梨的研究证实,4-CPA也在第一和第二阶段促进了更高的果实生长速度和果实颜色发展,但没有提高最终果实大小(张和惠特,2011年).然而,细胞分裂素处理对果实质量没有显著的促进作用,除了‘PC 8011-3’的CPPU提高了14% (表3)、猕猴桃、葡萄和梨(Bangerth和Schröder, 1994;Patterson等人,1993)。多胺被认为是抗乙烯物质(Apelbaum et al., 1981),具有生长促进剂的特性(Rugini等,1985年).与Put和Spd相比,Spm分别使“Tieton”和“Regina”的果实重量分别提高了27%和24% (表24).此外,还将收获的果实按行大小分类,用于果实大小评价。GA.3.在花期施用“Bing”对提高果实大小的效果最好,在9.5行数时为3.3%,在10行数时为20%,在10.5行数时为40%,而对照则各为1.3%、15.3%和32.6% (图8).当“弯曲”与对照相比,在“Bing”时,每个类别可以观察到显着的增强。浆果大小增强也在葡萄中发现葡萄(Stewart等,1958; Weaver和Mccune,1959)。GA.4/7在10.5行尺寸以上的果实高73%的含量最高,而“泰顿”仅为13.5%。BA和TDZ均显示出比CPPU和托普林治疗中的第10.5行上方的15%至30%的果实百分比增加了15%至30%。图8).当苹果被BA处理时,检测了细胞分裂的额外刺激和最终果实大小的增强(Stern et al., 2003)。4-CPA在“Bing”(52%)和“PC8011-3”(50%)的第10.5行以上比例较高,而在“Tieton”中仅为18%。用4-CPA处理的桃子也得到了同样的结果(Crane, 1953)。‘Regina’放果量略有增加,第10行放果量为29.33%,比对照增加9.33%。Spm对‘Regina’的果实大小影响较小,但对‘Tieton’的影响较大,10.5行有29.3%的果实,比对照多出20%。

总可溶性固形物、硬度和颜色。

以前的研究表明,单独的气体可以改善果实尺寸和延迟果实成熟和外豚着色(Clayton等,2006; Cline; Cline和Trouging,2007; Kappel和Macdonald,2002;张和惠特,2011年但2013年)然而,研究较少的研究已经研究了PGRS在果实质量开花期间应用的影响。在绽放,均为GA1和遗传算法3.单独处理能提高果实的硬度,降低可溶性固形物含量(TSS)3.而不是遗传算法1延迟颜色开发(表12).GA.3.与对照相比,甜樱桃的颜色成熟也延迟了,果实成熟的时间也增加了(Choi et al., 2002),而外源施用GA3.还增加了“甜心”和“Skeena”的硬度并减少了TSS (Einhorn et al., 2013)。GA.4/7单独施用不影响果实硬度和外果皮颜色,但降低了‘Bing’和‘Tieton’的TSS。此外,遗传算法4/7,与GA结合时3.减少TSS并延迟“Bing”中的颜色开发。除了在“Bing”中的TDZ,Cytokinins的叶面施用不会影响果实的坚定性。相反,CPPU降低了TSS和延迟颜色开发。然而,其他Cytokinins没有影响着色发育,而TDZ和Topolin均在“Bing”中除了BA治疗之外的水果TS。4-CPA在阶段和II和II和II和果实发育中刺激更高的果实生长速率,但它没有改善最终的果实大小(张和惠特,2011年).在此,在盛开时施加的4-CPA对“Bing”或“PC8011-3”中的果实强度,TS或色彩发育没有影响,但它减少了“泰国”中的果实颜色发展延迟的果实性能和增加的TS。多胺不会影响'Tieton'和'Regina'中的水果颜色开发。将观察到16%(SPM)和6%(SPD)增强,与“Tieton”和“Regina”进行了控制。

PGRs vs. return bloom。

花卉诱导是一种通过内源激素在很大程度上控制的过程。各种PGR的外源性应用可以显着影响随后的季节(Lenahan等,2006)中的甜樱桃花卉诱导和绽放密度。甜蜜的樱桃有两个花密度的关键组成部分:每次刺激的花芽数量和每个芽内的花朵数量。在目前的研究中,PGR对花蕾/刺和鲜花/芽'的鲜花/芽'具有可变影响。在GA异构体中,GA1有增加花蕾/花梗的潜力,而GA3.花芽/距显著减少,且对照与赤霉素无显著差异4/7随着遗传算法3.+ GA4/7治疗(图9).GA.4/7也没有影响“Golden Delicious”的回报盛开(McArtney等,2007)。在细胞蛋白,BA,CPPU和TOPLIN中,不影响花蕾/刺激。Cytokinin也没有影响梨在测试水果套时的回报绽放(Flaishman等,2001)。TDZ治疗显着降低了花蕾/刺激≈20%(图9).4-CPA与对照组无显著差异。

图9所示。
图9所示。

叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃‘冰’回春开花和花蕾发育的影响

引用:HortScience长的矮2021;10.21273 / HORTSCI15835-21

结果表明,两种赤霉素均为单次施用3.和遗传算法4/7显著降低每芽花数;然而,其他处理对每个芽的花的数量没有任何积极的影响。加在一起,未加处理的每花柱的开花势约为11朵花(即每花柱4.9芽×每花柱2.2花)。治疗遗传算法3.,Ga4/7,TDZ将分别预测每次刺激的3.5朵花的花密度,与对照相比,这是显着的降低(图9 b).有趣的是,Ga3.和遗传算法4/7处理似乎降低了花密度,但它们的组合没有。进一步研究PGR对还田水华密度的影响是必要的;降低产量潜力50%以上的处理(如GA3.)可能不会是商业上的。

坐果过多会造成低品质果实的高产,而坐果不足则会造成甜樱桃的经济损失。目前的研究表明,在甜樱桃叶中应用PGRs为优化坐果和改善果实品质提供了一种潜在的实用途径。结果表明,BA、Topolin和TDZ可作为水果稀释剂的选择,GA可作为水果稀释剂的应用3.或者ga4/7单独导致小年结果。CPPU虽然能增加坐果率,但通常会延缓果实成熟和颜色发育。叶面施用4-CPA显著提高了‘Bing’的坐果率和果实大小。与GA单独的其他同分异构体相比,GA的结合3.和遗传算法4/7更有效地改善水果套装。GA.4/74-CPA还能延长胚珠寿命,这与更高的坐果率和更好的果实质量有关。甜樱桃果实对多胺的响应取决于品种特性和浓度。

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贡献者的笔记

C.Z.和M.W.为通讯作者。电子邮件:acaizh@sjtu.edu.cnmdwhiting@wsu.edu

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  • Influence of plant growth regulators (PGRs) applied at full bloom on fruit set in sweet cherry \u2018Bing\u2019. Data are average ± se<\/span>. Different letters represent a significant difference among PGRs at a P<\/em> level of 0.05 (least significant difference test). 4-CPA = 4-chlorophenoxyacetic acid; BA = N6-benzyladenine; CPPU = N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea; GA = gibberellin; TDZ = N-phenyl-N'-(1, 2, 3-thiadiazol-5-yl) urea; Topolin = 6-(3-hydroxybenzylamino) purine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 1.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig1.jpg"],"id":"F1_0"}],"id":"F1"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    开花时施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Bing’坐果的影响数据平均值±se.不同字母表示在a时PGRs之间存在显著差异P水平0.05(最低显著差异检验)。4-CPA = 4-氯苯氧基乙酸;ba = n6-苄基腺嘌呤;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;TDZ = N-苯基-N' - (1,2,3-噻唑-5-基)尿素;托普林蛋白= 6-(3-羟基苄基氨基)嘌呤。

  • Effect of plant growth regulators (PGRs) applied at full bloom on fruit set in sweet cherry \u2018Tieton\u2019. Data are average ± se<\/span>. Different letters represent a significant difference between PGRs at a P<\/em> level of 0.05 (least significant difference test). CPA = 4-chlorophenoxyacetic acid; CPPU = N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea; GA = gibberellin; Put = putrescine; Spd = triamine spermidine; Spm = tetraamine spermine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 2.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig2.jpg"],"id":"F2_0"}],"id":"F2"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    开花期施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Tieton’坐果的影响数据平均值±se.不同的字母表示PGRs在a处的显著差异P水平0.05(最低显著差异检验)。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

  • Effect of foliar application of plant growth regulators at full bloom on pollen tube growth in sweet cherry \u2018Tieton\u2019. CPA = 4-chlorophenoxyacetic acid; CPPU = N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea; GA = gibberellin; Put = putrescine; Spd = triamine spermidine; Spm = tetraamine spermine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 3.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig3.jpg"],"id":"F3_0"}],"id":"F3"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    植物生长调节剂在甜樱桃'泰龙盛开植物生长调节器对花粉管生长的影响。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

  • Effect of foliar application of plant growth regulators at full bloom on ovule viability in sweet cherry \u2018Tieton\u2019. (A<\/strong>) Primary ovule; (B<\/strong>) secondary ovule. CPA = 4-chlorophenoxyacetic acid; CPPU = N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea; GA = gibberellin; Put = putrescine; Spd = triamine spermidine; Spm = tetraamine spermine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 4.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig4.jpg"],"id":"F4_0"}],"id":"F4"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    开花时叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Tieton’胚珠活力的影响。(一个)主要胚珠;(B)二次卵子。CPA = 4-氯苯氧基乙酸;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

  • Influence of plant growth regulators (PGRs) applied at full bloom on fruit set in sweet cherry \u2018Regina\u2019. Data are average ± se<\/span>. Different letters represent significant difference between PGRs at a P<\/em> level of 0.05 (least significant difference test). Put = putrescine; Spd = triamine spermidine; Spm = tetraamine spermine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 5.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig5.jpg"],"id":"F5_0"}],"id":"F5"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    开花时施用植物生长调节剂对甜樱桃‘Regina’坐果的影响数据平均值±se.不同的字母代表了PGR的显着差异P水平0.05(最低显著差异检验)。把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺。

  • Effect of foliar application of N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea (CPPU) and 4-chlorophenoxyacetic acid (4-CPA) at full bloom on fruit set in sweet cherry \u2018PC-8011-3\u2019. Data are average ± se<\/span>. Different letters represent a significant difference among plant growth regulators at a P<\/em> level of 0.05 (least significant difference test). Control I: control interior; Control R: control roadside.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 6.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig6.jpg"],"id":"F6_0"}],"id":"F6"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    Effect of foliar application of N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea (CPPU) and 4-chlorophenoxyacetic acid (4-CPA) at full bloom on fruit set in sweet cherry ‘PC-8011-3’. Data are average ±se.不同的字母表示不同的植物生长调节剂在aP水平0.05(最低显著差异检验)。控制I:控制内部;控制R:控制路边。

  • Effects of foliar application of plant growth regulators at full bloom on fruit growth in sweet cherries (A<\/strong>) \u2018Bing\u2019, (B<\/strong>) \u2018Tieton\u2019, (C<\/strong>) \u2018PC 8011-3\u2019, and (D<\/strong>) \u2018Regina\u2019. 4-CPA = 4-chlorophenoxyacetic acid; BA = N6-benzyladenine; CPPU = N-(2-chloro-4-pyridyl)-N'-phenylurea; GA = gibberellin; Put = putrescine; Spd = triamine spermidine; Spm = tetraamine spermine; TDZ = N-phenyl-N'-(1, 2, 3-thiadiazol-5-yl) urea; Topolin = 6-(3-hydroxybenzylamino) purine.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 7.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig7.jpg"],"id":"F7_0"}],"id":"F7"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    花期叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃果实生长的影响(一个)“必应”,(B)“Tieton”,(C)'PC 8011-3',和(D)“女王”。4-CPA = 4-氯苯氧基乙酸;ba = n6-苄基腺嘌呤;CPPU = N-(2-氯-4-吡啶基)-N'-苯脲;ga =吉布林素;把=腐胺;三胺亚精胺;SPM =四胺精胺;TDZ = N-苯基-N' - (1,2,3-噻唑-5-基)尿素;托普林蛋白= 6-(3-羟基苄基氨基)嘌呤。

  • Effects of foliar application of plant growth regulators at full bloom on fruit size distribution in sweet cherries (A<\/strong>) \u2018Bing\u2019, (B<\/strong>) \u2018Tieton\u2019, (C<\/strong>) \u2018PC 8011-3\u2019, and (D<\/strong>) \u2018Regina\u2019.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 8.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig8.jpg"],"id":"F8_0"}],"id":"F8"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    花期叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃果实大小分布的影响(一个)“必应”,(B)“Tieton”,(C)'PC 8011-3',和(D)“女王”。

  • Effects of foliar application of plant growth regulators on return bloom and flower bud development in sweet cherry \u2018Bing\u2019.<\/p><\/caption>","header":"Fig. 9.","imageUris":["/view/journals/hortsci/aop/article-10.21273-HORTSCI15835-21/full-HORTSCI15835-21fig9.jpg"],"id":"F9_0"}],"id":"F9"}" aria-selected="false" role="option" data-menu-item="list-id-33c9cd52-6e64-4b75-9cad-df0be329d2f0" class="ListItem ListItem--disableGutters ListItem--divider">

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    叶面施用植物生长调节剂对甜樱桃‘冰’回春开花和花蕾发育的影响

  • aloisi,一世。蔡,G。Faleri,C。Navazio,L.Serafini-Fracassini,D。del duca,S.2017通过调节Ca2 +依赖肌动蛋白组织和细胞壁结构来调节花粉管生长前面。植物科学。81701doi:https://doi.org/10.3389/fpls.2017.01701

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    • 出口引文
  • aloisi,一世。蔡,G。Serafini-Fracassini,D。del duca,S.2016花粉中的多胺:从微孢子发生到施肥前面。植物科学。7155doi:https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00155

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  • 奥特曼,一个。弗里德曼,R.阿米尔,D。莱文,N。1982压力条件下植物中的多胺效应和代谢

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  • Apelbaum,一个。Burgoon,A.c。安德森,法学博士利伯曼,mBen-Arie,R.马特,A.K.1981多胺在高等植物组织和果实原生质体中抑制乙烯生物合成植物理性。68.453.456.

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  • Bangerth,F。施罗德,m1994赤霉素与合成的细胞分裂素N-(2-氯-4-吡啶)-N-苯脲具有较强的协同效应,对苹果单性果座果和其他果实性状有较强的协同效应植物生长Regulat。15293302

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  • Canli,粮农组织的Sahin,mErcisli,S.伊利马斯,O.Temurtas,N。Pektas,m2015通过预先收获苄基腺嘌呤和苄基腺嘌呤加吉布林素应用,改善了甜樱桃的收获和前列素质量j:。机器人。食品质量88.

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  • Cano-Medrano,R.达内尔,R.L.1998GA3和授粉对兔眼蓝莓坐果和发育的影响Hortscience33632.635.

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  • 卡雷拉,E。Ruiz-Rivero,O.佩雷斯,L.E.P.Atares,一个。Garcia-Martinez,J.L.2012通过对proccera番茄突变体的特性分析,发现SlDELLA蛋白在调控开花形态、细胞分裂和扩张以及座果和发育过程中生长素信号通路方面具有新的功能植物理性。160.1581.1596doi:https://doi.org/10.1104/pp.112.204552

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  • 崔,C。威尔斯曼,P.Toivonen,P.kappel,F。2002赤霉素处理甜樱桃果实的生长、硬度和细胞壁水解酶活性J. Hort。SCI。Biotechnol。77.615621doi:https://doi.org/10.1080 / 14620316.2002.11511547

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  • 克莱顿,mBiasi,研究4 -羰基戊醛琼脂,信息技术Southwick,克里Mitcham,E.J.2006采前用氰酰胺氢、硝酸钙铵或赤霉酸处理的“冰”甜樱桃的感官品质Hortscience41745748

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  • 渐变群,j。Trought,m2007赤霉酸对冰樱桃和山姆樱桃果实开裂及品质的影响可以。j .植物科学。87.545550

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  • 哥,G。Baraldi,R.Bagni,N。1983腐胺对苹果(cv Ruby Spur)坐果的影响果树开花结果149189.196.

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  • 起重机,J.C.Rebeiz,C.A.坎贝尔,R.1961赤霉素诱导黑尔桃单性结实及其产生“纽扣”的可能原因Proc。amer。SOC。座位。SCI。111118

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  • Crisosto,C.H.Grantz,D.A.·美茵茨合作撰写,F。1992水分亏缺对咖啡(Coffea arabica L.)开花的影响树生理。10127139

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  • Cubero,j。托莱奥,F。加里多,mHernández,mMaynar,j。Barriga,C。罗德里格斯,一个。2010通过HPLC-荧光在樱桃中的氨基酸色氨酸的测定食物肛门。方法3.3639

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  • 德容,m马里安尼,C。Vriezen,W.H.2009生长素和赤霉素在番茄坐果中的作用j .实验机器人。60.15231532doi:https://doi.org/10.1093/jxb/erp094

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  • 加里多,m埃斯皮诺,j。Toribio-Delgado,A.F.Cubero,j。Maynar-Marino,J.I.Barriga,C。裴瑞兹,堡。罗德里格斯,他还是2012一种以樱桃为基础的产品,作为色氨酸的供应Intl。j .色氨酸Res。5S9394

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  • 赫梅斯,K.金,Y.J.公园,K.Y.moschou,P.N.Andronis,E。瓦萨迪,C。Roussis,一个。Roubelakis-Angelakis,K A。2016NADPH-氧化酶/聚胺氧化酶反馈回路控制盐度下的氧化爆发植物理性。172.14181431doi:https://doi.org/10.1104/pp.16.01118

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  • Gemici,mBengu,T.装备,T.20062,4 - d和4-CPA对番茄产量和品质的影响Lycopersicon esculentum磨坊主J.教师SCI。292432

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  • Holzschuh,一个。Dudenhöffer,J.-H.Tscharntke,T.2012野生蜜蜂栖息地的景观增强了粉刷,水果套和甜樱桃的产量医学杂志。Conserv。153101107

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  • isaacs,R.柯克,A.K.2010野生和管理的蜜蜂为小型和大型高丛蓝莓田提供授粉服务j:。生态。47841849

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  • kappel,F。麦克唐纳,R.2007早期的凝胶酸喷雾增加了“甜心”樱桃的坚固和果实大小J. Amer。乳头。SOC。61.38

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  • kappel,F。麦克唐纳,R.A.2002赤霉酸增加了水果的坚定,水果大小,延迟了“甜心”甜樱桃的成熟度J. Amer。乳头。SOC。56.219.

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  • 近藤,S.Hayata,Y。Iwasaki,N。1998吲哚乙酸和赤霉素对甜樱桃果实发育成熟的影响

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  • Modlibowska,一世。1972胃纤维素和细胞质素对Bramley幼苗苹果果实开发的影响J. Hort。SCI。47337340

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  • Usenik,V。Kastelec,D。Štampar,F。2005甘草酸应用相关的甜樱桃果实的物理化学变化食品化学。90.663.671.

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